グルカゴン様ペプチド-1（GLP-1）類似体は、グルコース依存性のインスリン分泌を促進し、満腹感を促進し、体重減少をサポートすることにより、重要な治療効果をもたらします。セマグルチド（Mounjaro^®、Ozempic^®、Rybelsus^®、Wegovy^®の有効成分）やリラグルチド（Victoza^®、Saxenda^®の有効成分）などの合成GLP-1受容体作動薬は、ネイティブのGLP-1に比べて安定性、半減期、有効性が向上するように設計されており、代謝疾患管理における重要な治療薬となっています。MMSは、未修飾GLP-1と市販のGLP-1類似体の濃度と二次構造を様々なバッファーと濃度の組み合わせにおいて測定し、構造的差異を特定することができます。

Figure 1：GLP-1 (7-37)、リラグルチド、セマグルチドの一次配列。すべての化学修飾と半減期（t_1/2）も示す。

Figure 2：PBSに溶解した2 mg/mL濃度のGLP-1(7-37)、セマグルチド、リラグルチドの二次構造を比較したもの。(A) 類似性プロットは、これらのペプチド間には明確なスペクトルの違いがあり、それらの違いは1656cm^-1付近の主要なピークと1640cm^-1付近の領域に見られることを示す。(B)HOS棒グラフから明らかであるように、3つのペプチドとも特にαへリックスとunordered構造における大きな構造変化がみられる。

Figure 3：PBSと製剤バッファー（FB）中のセマグルチドとリラグルチドの二次構造の比較。（A）類似性プロットは、各製剤中のリラグルチドとセマグルチドの両方が類似していることを示しているが、1640cm^-1領域にわずかな違いが見られる。スペクトルの変化を高次構造へと定量化すると（B）、製剤バッファー（FB）からのバッファー交換による明らかな変化が見られる。各ペプチドは、製剤バッファー中ではαヘリックス構造がより多くなり、ターン構造はより少なくなっている。これはおそらく、より高いネイティブ構造による安定性の増加を示している。

RedShiftBio Application Note AN-850-0147 “Structural Characterization of GLP-1 Analogues and Formulations Using Microfluidic Modulation Spectroscopy” より引用

バイオ医薬品の融解温度(Tm) は、特に機能性、製造性、製剤の安定性を明らかにするものであるため、特性評価において極めて重要です。さらにTm は、標的タンパク質や標的RNAに対する低分⼦医薬品候補の安定化効果を報告することができる汎⽤性の⾼いパラメーターです。Tm は、分⼦の半分がアンフォールディングし、半分がフォールディングする温度であるため、Tmが⾼いほど⾼分⼦は安定です。従来、Tm を測定する装置はTm のみ提供し、構造に関する他の情報や⽂脈を提供しませんでした。しかしながら、Aurora TXにより、MMS を⽤いてTm を測定することが可能になり、ランプに沿った各温度における完全な⼆次構造情報が得られます。このことにより、どの構造成分が変化しているかを観察し、2D ヒートマップを⽤いてバイオ医薬品の異なる部分の安定性に対する異なる薬物や構造の影響を調べることができます。

Figure 1.（A）pH 3における2mg/mL リゾチームの融解曲線。一次微分プロットはTm を示す。αヘリックス構造の量に対応する1656 cm^-1 のシグナルのみに注⽬している。（B）pH3、4、5、7における融解曲線のオーバーレイ。pH4のサンプルのTm が最も⾼く、これが最も安定な製剤pHであることを⽰している。

Figure 2.（A）反転ヒートマップとしてのMMS熱融解プロット。y軸は温度、x軸は波数で、⻩⾊の領域は構造の減少を、濃⻘⾊は構造の増加を⽰している。（B）リゾチームの高次構造（HOS）棒グラフ。温度によるαヘリックスの減少とターン構造の増加を示す。（C）IgG の2D MMS 融解プロット。IgG のアンフォールディングはリゾチームに⽐べてはるかに⾼い温度で起こることを示している。（D）IgG で観察された構造の変化。特に平行βシート（beta）の減少と逆平行β（beta-）の増加を認めた。

RedShiftBio Application Note AN-850-0144 “Structural Characterization and Comparison of Temperature Stress on a Protein Library Across pH and Concentration using Microfluidic Modulation Spectroscopy“ より引用

治療用mRNA薬剤は、mRNAを転写可能な適切な臓器に送達するため、脂質ナノ粒子（LNP）に製剤化されます。しかしながら、イオン化可能な脂質によって核酸塩基が修飾され、mRNAの活性と安定性を低下させることが観察されています。この修飾には、イオン化可能な脂質が核酸塩基と共有結合することが関与しており、その結果、結合しているRNA分子に脂質付加物が生じます。この研究では、pH7とpH5のpolyC（i-motif）をRNAとして、SM-102を脂質として用いました。

Figure:（A）SM-102脂質の構造。（B）pH7におけるpolyCと脂質処理polyCのMMSスペクトル。（C）pH7におけるpolyCと処理polyCの微妙な違いを強調するMMSデルタプロット。（D）i-motif形成を促進するpH5におけるpolyCと処理polyC。（E）pH5におけるpolyCと処理polyCのMMSデルタプロットは、脂質処理サンプルの塩基対形成の消失を示す。

リボスイッチは、タンパク質産⽣を制御するために特定のmRNA セグメントの翻訳を制御する、⼩さく折りたたまれたmRNA 配列です。それぞれのリボスイッチは、結合時に構造変化を引き起こしリボスイッチの活性化をもたらす、ユニークな低分⼦を含んでいます。S-アデノシルメチオニン(SAM)-I リボスイッチは、多くの細胞プロセスに関与する重要な代謝産物であり、細胞内のSAM 濃度の変動に応答して遺伝⼦発現を制御します。

本研究では、⽂献から得られたX 線結晶構造解析データとMMS を⽤いて、リガンド結合に伴うSAM-I リボスイッチの構造変化を明らかにし、⾒かけの解離定数Kd を決定しました。MMS により、結合親和性だけでなく、結合に伴う構造変化についての総合的な理解を深め、治療⽬的のRNA の新規低分⼦制御因⼦の開発に役⽴てることができます。

Figure 1. リガンドが結合したSAM-I リボスイッチのX線結晶構造 (PDB: 2GIS) とSAM の化学構造。
Copyright 2017 by RNA Society.

Figure 2. SAMの結合によりSAM-I リボスイッチに構造変化が起こる。Four-way junction にSAM が結合すると、P1 ドメインはリガンドに結合するために回転し、次にP4 ドメインに⼤きなアロステリック変化を引き起こす。Dussault, A.-M. et al., RNA. 2017 Oct;23(10):1539-1551より引⽤。Copyright 2017 by RNA。

Figure 3. (左) アポ型リボスイッチとリガンド結合型リボスイッチのMMSスペクトル（類似性プロット）。 (右) アポ型リボスイッチとリガンド結合型リボスイッチのMMSスペクトル（類似性プロット）とピークの割り当て (ss: ⼀本鎖、ds: ⼆本鎖、ts: 三本鎖)。1690、1640-1670、1604 cm^-1の領域のピークに変化があり、これらはそれぞれ主にグアニン、ウラシル／シトシン、アデニンに割り当てられる。特に、1690 cm^-1 における強度の増加は、⼆本鎖または塩基対状態におけるグアニンC=O 伸張を⽰している。リガンドが結合したSAM-I リボスイッチの結晶構造(PDB: 2GIS) から、この結合がリボスイッチのU57、A45、A46、G11、G58 とSAM の相互作⽤を伴ったものであることが⽰された。

Figure 4. (左) SAM-I リボスイッチ (濃度0.67mg/mL (22 μM)) へのSAM の⽤量依存的滴定。SAM 濃度が⾼くなるにつれて、スペクトルが徐々に変化していることが観察された。1695 cm^-1 における増加は、Figure 3 に⽰されたグアニン塩基対形成を⽰唆している。1604 cm^-1 から1607 cm^-1 へのシフトは、2 つのアデニン(A45、A46) とSAM との相互作⽤によるものと考えられる。(右) SAM 滴定に対するarea of overlap (AO) のスペクトル変化。Apo 型リボスイッチをリファレンスとして⽤いた。SAM 濃度が⾼くなるにつれてスペクトル変化は⼤きくなる。スペクトル変化(⻘) は、〜20μM 以降、すなわち、リガンドとリボスイッチのモル⽐が1:1 程度であるSAM 濃度でプラトー化し、本研究で観察されたスペクトル変化が、実際にリガンド結合によるものであることを⽰す。スペクトル差の1 次微分(⾚) は、スペクトル変化が最も速く起こるSAM 濃度が4μM であることを強調する。

RedShiftBio Application Note AN-850-0142 “Structural Characterization of RNA and Detection of RNA-ligand Binding Using Microfluidic Modulation Spectroscopy” より引用